Процедура определения группы крови и резус-фактора

Определение резус-фактора экспресс-методом

В последнее время для определения
резус-принадлежности применяют
экспресс-метод. Реакцию проводят в
пробирках без подогрева. Для этого
необходима специальная, универсальная
для всех групп крови системы АВО
сыворотка, приготовленная особым
способом на полиглюкине.

В пробирку помещают 1 каплю сыворотки,
добавляют 1 каплю исследуемых эритроцитов
и после 3-минутного покачивания заливают
3-5 мл изотонического раствора хлорида
натрия, трижды переворачивают пробирку
и определяют результат в отраженном
свете. Наличие агглютинации свидетельствует
о наличии Rh-антигена.

Широко применяется также желатиновый
экспресс-метод, основанный на добавлении
к крови 1 капли 10 % раствора желатина и
10-минутной инкубации пробирок при 37°С
и добавлении теплого изотонического
раствора хлорида натрия;

На этом же принципе основан метод
определения Rh с папаином.

Любой из этих методов может быть
использован в экстренных случаях.
Независимо от результатов проведенных
исследований и имеющихся данных об
идентичности групп крови донора и
реципиента перед переливанием крови
необходимо провести пробы на индивидуальную
совместимость.

Техника определения групп с помощью цоликлонов

– белковые гидролизаты: гидролизин,
аминопептид, аминокровин, амикин,
аминозол, амиген;

– смеси аминокислот: полиамин, мориамин,
аминофузин, вамин, фриамин, аминон,
левамин, альвезин.

Показания – лечение белковой недостаточности,
развивающей­ся при различных тяжелых
заболеваниях и в послеоперационном
периоде.

группа крови и резус-фактор

Для парентерального углеводного питания:
растворы глюкозы 5%, 10%, 20%.

Для парентерального жирового питания
– жировые эмульсии: липофундин,
интралипид, липомайз.

Определение данным методом производится в лабораторных условиях. Температура воздуха должна находиться в пределах 15 – 25 градусов по Цельсию. Исследование должно проводиться при достаточно хорошем освещении.

Реагенты необходимо хранить плотно закрытыми, так как при высыхании значительно снижается активность антител.

Нельзя использовать содержащие хлопья и мутные реагенты. Для каждого из реагентов требуется отдельная пипетка.

Анализ проводится на белой тарелке или планшете с хорошо смачиваемой поверхностью. Благодаря высокой активности и авидности цоликлонов, есть возможно применение по серии реагентов анти-A и анти-B.

Определение групп крови

Возле моноклональных антител капают по одной капле крови, смешивают ее уголком предметного стекла или стеклянной палочкой с реагентами. Перед дальнейшим смешиванием пар капель необходимо тщательно промыть и насухо вытереть стекло или палочку.

Агглютинаты достаточно хорошо видны даже невооруженным глазом, быстро сливаясь и образуя большие хлопья. В случае, если не происходит склеивания, капля реагента приобретает равномерную окраску красного цвета.

Выделяют эритротест-цоликлон анти-D.

Существуют три разновидности:

  • анти-D-цоликлонОбычный анти-D-цоликлон. При его добавлении развивается реакция непрямой агглютинации,
  • Супер. Вызывает прямую агглютинацию,
  • Препарат анти-D-микс, имеющий в составе компоненты обычного и супер цоликлона анти-D). С их помощью можно как выявить группу крови, так и определить резус-принадлежность крови.

Отличие других растворов состоит в названии, поскольку входящие в их состав антитела – иммуноглобулины М и G – предоставляют возможность только произвести типизацию крови по антигенам АВ0. Различие заключается исключительно в механизме слипания эритроцитов (агглютинация прямая/непрямая).

Цоликлоны – это раствор моноклональных антител к антигенам, которые размещены на оболочке эритроцитов. Генная инженерия дала возможность синтезировать вещество в искусственно созданных условиях с использованием мышей.

Цоликлоны для определения групп крови бывают трех типов: анти-А (красная жидкость), анти-В (синяя) и анти-D (прозрачная).

Кабинет исследователя нужно обеспечить хорошим освещением, а температуру поддерживать от 15 до 25°С выше ноля.

Нельзя брать для исследования цоликлоны с неплотно закрытой крышкой, потому что после испарения жидкости активность антител снижается. Если на дне флакона образовались хлопья, то такой реагент нужно заменить, иначе результат будет ложным.

Кровь чаще используется капиллярная, берут ее из пальца (около 5мл) непосредственно перед процедурой определения группы крови.

Процедура определения группы крови и резус-фактора

Реагенты смешивают на специальном белом планшете, где ячейки подписывают соответственно: А, В, D. В каждую из них помещают каплю цоликлона (0,1мл) и рядом располагают капли крови (отдельной пипеткой для каждой ячейки) в соотношении 10:1.

Чтобы узнать резус-фактор, в ячейку с подписью D наносят каплю соответствующего реагента и немного меньше крови, если наблюдается агглютинация – кровь резус положительная, если осадок не образовался – резус-отрицательная.

Цоликлоны – это антитела, которые получают посредством технологий генной инженерии. Обычно для получения цоликлонов берутся лабораторные мыши – животным вводится специальный препарат, после чего производят забор жидкости из брюшной полости – именно она и содержит необходимые для проведения анализа вещества.

Цоликлоны

Цоликлоны

Именно агглютиногены, а точнее их типы, и служат основой для классификации групп крови: так, у носителей первой группы данные вещества отсутствуют, у обладателей второй имеются агглютиногены типа А и т. д.

Группа крови и резус фактор – фото

Группа крови и резус фактор – фото

Цоликлоны выпускаются в виде жидкости, разлитой во флаконы по 5 мл или 10 мл, причем каждый ее тип имеет специфические характеристики:

  • анти-А представляет собой жидкость красноватого цвета;
  • анти-В имеет синий оттенок;
  • анти-АВ (анти-D) – бесцветный прозрачный раствор.

Преимущество цоликлонов перед другими химическими реагентами заключается в том, что они не требуют специальной подготовки к анализу и позволяют провести его в кратчайшие сроки. Кроме того, они не являются клетками человеческого организма, поэтому инфекционное заражение медперсонала при контакте с веществами полностью исключено.

Определение групп крови по системе АВ0 при помощи цоликлонов Анти-А и Анти-В

Определение групп крови по системе АВ0 при помощи цоликлонов Анти-А и Анти-В

Где можно провести анализ?

Алгоритм определения группы крови AB0 и резус-фактора цоликлонами облегчает и стандартизирует процедуру типирования. Позволяет однозначно интерпретировать результат реакции антиген/антитело. Для каждого исследования по системе AB0 достаточно одной серии реагентов.

Объект исследования – цельная кровь, эритроцитарная масса, отмытые эритроциты, клетки крови в сыворотке или физрастворе. В качестве примера приводим схему проведения типирования крови человека по системе антигенов AB0.

  1. Обеспечьте яркое освещение помещения и температуру воздуха 15 – 25 °C.
  2. Промаркируйте лунки планшета: Анти-A, Анти-B, Анти-AB.
  3. Добавьте в подписанные лунки по одной капле (приблизительно 0,1 мл) реагентов Анти-A, Анти-B, Анти-AB.
  4. Поместите по одной маленькой капле концентрированной эритроцитосодержащей среды (0,01 – 0,03 мл) рядом с большой каплей каждого реагента.
  5. В каждой из трех лунок отдельной стерильной стеклянной палочкой смешайте моноклональный реагент с кровью.
  6. Плавно покачивайте планшет 2,5 – 3 минуты. Обычно агглютинация формируется в течение 5 – 10 секунд. Запас времени необходим для обнаружения слабых вариантов антигенов.
  7. Проведите визуальную оценку результатов реакции в каждой лунке. Результат реакции свидетельствует об обнаружении соответствующего агглютиногена.
отбор образца крови
внесение образца в лунку
планшет с внесенными образцами
добавление реагентов
планшет с эритроцитами и реагентами

Таблица результатов определения группы крови с помощью цоликлонов.

Групповая принадлежность Моноклональный реагент
Анти-A Анти-B Анти-AB
0(I)
A(II)
B(III)
AB(IV)

« » – положительный результат реакции;«-» – отсутствие агглютинации.

  • Отрицательный результат реакции во всех трех лунках свидетельствует об отсутствии агглютиногенов. Группа: 0(I).
  • Агглютинация с Анти-A и Анти-AB говорит о наличии агглютиногена A. Групповая принадлежность: A(II).
  • Реакция в лунках с Анти-B и Анти-AB указывает на наличие антигена B. Групповая принадлежность: B(III).
  • Реакция во всех трех лунках говорит о присутствии обоих антигенов. Группа: AB(IV).
смешивание анализируемых проб с цоликлонами
инкубация планшета после перемешивания
результат реакции
визуальная оценка результатов реакции
регистрация результатов анализа

Методика проведения исследования с помощью цоликлонов требует обязательного подтверждения результатов реакции выявлением агглютининов α и β стандартными эритроцитами.

Алгоритм определение резус фактора цоликлонами представлен в соответствующей статье.

Группа и резус-фактор – генетически обусловленные характеристики крови, которые наследуются от родителей и остаются неизменными на протяжении всей жизни человека. Классификация групп крови осуществляется, исходя из определенного набора биохимических параметров и состава антигенов, и насчитывает 4 основных группы.

Переливание пациенту крови несовместимой группы или с другим резус-фактором несет с собой смертельную опасность – иммунная система начинает вырабатывать антитела против чужеродных клеток, которые атакуют и разрушают их.

Таблица групп крови и резус-факторов

Таблица групп крови и резус-факторов

Для определения группы крови с использованием цоликлонов необходима плоская ровная поверхность (планшетка), смоченная водой, набор химических реагентов и пробы биологической жидкости, причем специалист может использовать любую кровь: капиллярную, венозную, замороженную и т. д.

  1. Стороны планшета помечают, чтобы не перепутать, на какую из них будет нанесен тот или иной тип цоликлонов.
    Процедура определения группы крови цоликлонами

    Процедура определения группы крови цоликлонами

  2. На поверхность капают по одной капле реагентов (обычно цилоклоны анти-А и анти-В) и крови, причем объем химических веществ должен в 8-10 раз превышать объем биоматериала.
  3. Подождать 3-5 минут, аккуратно покачивая планшет, чтобы жидкости хорошо смешались, а эритроциты не оседали по краям образцов.
Планшет для определения группы крови

Планшет для определения группы крови

Интерпретация результатов процедуры проводится визуально – жидкости либо полностью соединяются, либо наступает склеивание (агглютинация) кровяных телец, вследствие чего биоматериал сворачивается и в нем образовываются мелкие хлопья.

Расшифровка осуществляется следующим образом:

  • если реакция отсутствует во всех образцах биоматериала, его можно причислить к I группе (это означает, что агглютиноген в клетках крови отсутствует);
  • вступление кровяных клеток в реакцию с цоликлоном анти-А свидетельствует о том, что кровь исследуемого человека относится к II группе;
  • склеивание эритроцитов с цоликлоном анти-В – признак III группы крови;
  • если биоматериал вступил в реакцию со всеми веществами, то он принадлежит к IV группе.
Исследуемая кровь группы О(I)

Исследуемая кровь группы О(I)

Для проверки точностии результатов и определения резус-фактора к образцам биоматериала добавляют цоликлон АВ – если произошла реакция агглютинации, он в крови определяется как положительный (отсутствие склеивания эритроцитов говорит об отрицательном резус-факторе).

Чтобы исключить заболевания, при которых агглютинация происходит при контакте с любыми раздражителями, капля крови пациента смешивается с физраствором. В случаях, когда визуально определить результат невозможно, анализ переделывают, а образцы рассматривают под микроскопом.

Таблица. Реакции разных групп крови с цоликлоном анти-А и анти-В.

Группа крови Реакция с цоликлоном анти-А Реакция с цоликлоном анти-В
I группа Отсутствует Отсутствует
II группа Положительная Отсутствует
III группа Отсутствует Положительная
IV группа Положительная Положительная
Цоликлон Анти-B флакон-капельница

Цоликлон Анти-B флакон-капельница

Процедура определения группы крови и резус-фактора

Чтобы результат анализа был максимально достоверным, при проведении процедуры необходимо соблюдать ряд условий:

  • реагенты должны храниться в холодном месте при температуре 2-8 градусов во флаконах с плотно закрученной крышкой (в случае нарушения правил хранения они быстро теряют свои свойства);
  • для проведения анализа нельзя использовать цоликлоны с истекшим сроком хранения (он составляет около 30 дней) или жидкости, которые содержат осадок, хлопья или мусор;
  • исследование выполняется в хорошо освещенном помещении при температуре воздуха не ниже 15 и не выше 25 градусов, причем в нем не должно быть грязи, пыли и других факторов, способных исказить результат;
    Температура воздуха во премя процедуры должна соответствовать

    Температура воздуха во время процедуры должна соответствовать

  • при нанесении биоматериала и реагентов на поверхность планшетки следует точно соблюдать пропорции – если крови будет слишком много, реакцию сложнее отследить, а в противоположном случае (при малом объеме) она будет слишком медленной;
  • нельзя допускать, чтобы капли крови, смешанные с разными типами цоликлонов, сливались вместе – если это случилось, исследование проводят заново; по этой же причине для смешивания реагентов с биоматериалом следует использовать разные палочки.
Процесс определения группы крови

Процесс определения группы крови

Продолжительность реакции должна составлять не менее 3 минут, а при сомнительном результате время наблюдения за образцами биоматериала следует продлить до 5 минут. Однако по истечении 10 минут может произойти подсыхание биоматериала и естественное выпадение эритроцитов в осадок, поэтому доверять такому исследованию не стоит.

Цоликлоны чувствительны к факторам окружающей среды, соответственно, при проведении исследования необходимо соблюдать температурный режим и правила гигиены – помещение должно быть чистым и сухим, а отдельные образцы крови не должны контактировать друг с другом.

Кроме того, при некоторых патологиях кровь человека способна менять свои характеристики, вследствие чего проведение исследования существенно усложняется. Так, при дисфункции печени, селезенки, септических процессах и обширных ожогах у пациентов наблюдается так называемая панагглютинация крови – эритроциты выпадают в осадок даже при реакции с физраствором.

Что влияет на результаты процедуры

Что влияет на результаты процедуры

Анализ с использованием цоликлонов – один из наиболее простых и точных способов определения группы крови человека. При соблюдении всех правил и условий проведения процедуры вероятность ошибочного результата сводится к минимуму, поэтому химические реагенты данного типа применяются практически во всех современных лабораториях.

Таблица сопоставления группы крови и цоликлона позволяет разобраться в результатах.

Цоликлон I положительная I отрицательная II положительная II отрицательная III положительная III отрицательная IV положительная IV отрицательная

Анти-А
Анти-В
Анти-D
  • Если отсутствует агглютинация (с анти-A и анти-B), эритроциты не содержат антигенов A и Б. Это I группа крови,
  • Если есть агглютинация только с анти-A, эритроциты содержат лишь антиген A, что характеризует II группу крови,
  • Если агглютинация только с анти-B, красные клетки содержат антиген B, что характеризует III группу,
  • Если наблюдается агглютинация c обоими цоликлонамми анти-A и анти-B, эритроциты содержат оба антигена. С целью исключения аутоагглютинации необходимо провести контрольную процедуру: в этом случае смешивают 0,1 миллилитр изотонического раствора хлорида натрия и 0,01 миллилитр исследуемой крови. Если реакция агглютинации отсутствует, определяется IV группа.

Иногда возможно получение недостоверных, ложных результатов. К примеру, если при добавлении к препарату крови изменился их цвет или если агглютинация наблюдается во всех ячейках планшетки.

1. Консервирование, хранение, транспортировка и макроскопическая оценка годности крови

В клинической практике в зависимости
от показаний применяют разнообразные
трансфузионные среды: цельная кровь,
свежестабилизированная, консервированная,
компоненты крови, кровезаменители и
другие.

Процедура определения группы крови и резус-фактора

Цельную кровь переливают непосредственно
от донора к реципиенту с помощью аппаратов
для прямого переливания крови.

Для непрямого переливания крови
используется свежестабилизированная
и консервированная кровь.

1. в жидком состоянии при температуре
выше или ниже 0°С;

2. в замороженном твердом состоянии при
температуре ниже 0°С (вплоть до
ультранизких, обеспечивающих многолетнее
хранение клеток крови).

Кровь, лишенная способности свертываться,
называется стабилизированной. Стабилизация
крови в несвернутом (жидком) состоянии
достигается связыванием или разрушением
одного из компонентов системы свертывания
крови.

Хорошо изучены и широко применяются
в практике консервирования крови
стабилизаторы, устраняющие ионы кальция.
Наиболее приемлемым из большой группы
анионов-стаби-лизаторов, связывающих
ионный кальций, является цитрат натрия.

Представителем другой группы
стабилизаторов, подавляющих действие
тромбина, является гепарин. Срок хранения
такой крови – до 24 часов.

При помощи катионообменной смолы можно
консервировать кровь без использования
антикоагулянтов. Для этой цели в систему
для взятия крови включается небольшая
ампула с катионитом. Кровь донора,
протекая через катионообменную смолу,
освобождается от кальция и не свертывается.

В экстренных случаях при отсутствии
консервированной крови можно в условиях
операционной заготовить свежецитратную
кровь с 4% раствором цитрата натрия. Ее
переливают не позднее двух часов после
эксфузии, так как она легко инфицируется.

Заслуживает внимания заготовка крови
при ультранизкой температуре (-196°С).
Для консервации эритроцитов крови
человека применяют два метода
замораживания: 1. очень быстрое охлаждение
(250 мл в течение 2 мин до -196°С) и хранение
в жидком азоте (при температуре -196°С),
не требующее применения больших
концентраций криозащитных веществ; 2.

медленное охлаждение, при котором
замерзание длится несколько часов при
умеренно низких температурах (от -25° до
-100°С) с применением больших концентраций
криозащитных веществ (в основном
глицерина в составе ограждающих
растворов).

Оба метода позволяют сохранять после
оттаивания неповрежденными 90-97%
замораживаемых эритроцитов в зависимости
от применяемых методов. Хранение
эритроцитов в течение 10 лет и более в
замороженном состоянии почти не влияет
на степень их структурной сохранности,
т.е. на биохимические параметры и
приживаемость в кровяном русле реципиента.

При консервации крови должны быть
обеспечены: 1. апирогенность консервированной
крови; 2. отсутствие в ней сгустков и
гемолиза (безупречная техника пункции
вен донора, осторожное покачивание
сосуда во время взятия крови); 3.

Включение в состав консервирующих
растворов хинина (с концентрацией его
в крови 0,02%) удлиняет срок хранения крови
до 45-50 дней. Добавление в консервант
антицитолизирующих веществ (дипразин,
этизин и др.

горлышко
флакона 2-3 раза опускают в расплавленный
парафин, находящийся в водяной бане (t
не более 90°С). После парафинизации на
горлышко флакона надевают колпачок из
вощеной бумаги или марли, который
укрепляют ниткой или резиновым кольцом.
Если горлышко флакона закрывается
марлевым колпачком, то проводят повторную
парафинизацию.

Пластикатные мешки герметизируют
запаиванием трубки при помощи токов
высокой частоты (аппарат Гематрон) или
завязывают трубки с находящейся в ней
кровью узлами на расстоянии 3 и 6 см от
мешка и у самой иглы.

Консервированная кровь, ее компоненты,
препараты (фибриноген, тромбин, альбумин
и иммуноглобулин), стандартная сыворотка
и эритроциты содержат в холодильниках
при температуре 4-8°С. При наличии большого
запаса крови целесообразно иметь
отдельный холодильник для каждой группы
крови.

Сухая плазма, препараты из крови,
кровезаменители, трансфузионные
пластикатные системы хранятся при
комнатной температуре ( 15-25°С) в шкафах.
Замороженный криопреципитат и
гипериммунная плазма хранятся в условиях
низкотемпературной камеры (температура
-25°С и ниже).

Холодильники для хранения трансфузионных
сред должны быть снабжены термометрами.
Температура в холодильных камерах
измеряется ежедневно 2 раза в сутки и
регистрируется в специальном журнале.

Транспортировка крови: с целью уменьшения
механической травматизации крови
флаконы должны быть заполнены до горла,
помещены вертикально в гнездах специальных
сеток-корзинок, которые затем устанавливают
в термостатистические (изотермические)
контейнеры.

Контейнеры типа ТКМ-14, ТКМ-7,
ТКМ-5, ТКМ-3 (внутри них создают температуру
от 4 до 8°С) крепятся в транспорте жестко,
а по прибытии на основную базу, флаконы
сразу же извлекают из гнезд сеток и
помещают в рефрижераторы или холодильные
камеры.

Пластикатные мешки укладывают в картонные
коробки, которые также помещают в
изотермические контейнеры. Флаконы или
мешки с резус-положительной кровью
укладывают отдельно от резус-отрица-тельной.

Непосредственно перед переливанием
крови для предупреждения развития
трансфузионных реакций и осложнений
врач обязан провести визуальную оценку
годности трансфузионной среды,
предназначенной для переливания
больному, а также проверить герметичность
укупорки сосуда с кровью, наличие
оформленной этикетки с указанием срока
годности и групповой принадлежности,
отсутствие в ней сгустков, гемолиза и
инфицирования.

О дефекте герметичности
можно судить по появлению трещин в
стекле, нарушению укупорки сосуда,
особенно просачивание крови. Кровь до
осмотра не должна быть взболтана,
необходимо хорошее освещение.

группы крови

Гемолиз
проявляется появлением розовой окраски
плазмы и исчезновением четкой границы
между слоем эритроцитов и плазмы, которая
характерна для доброкачественной крови.
Если кровь взболтана, то следует взять
5 мл крови и отцентрифугировать ее.
Розовый, а тем более красный цвет плазмы
указывает на гемолиз.

Выявление в консервированной крови
сгустков, особенно массивных, служит
основанием для отказа от ее использования.
С целью предупреждения попадания в
кровь мельчайших сгустков необходимо
для переливания крови использовать
систему с фильтром.

Инфицирование крови,
плазмы точно определяют бактериологическим
исследованием, однако массивное
бактериальное загрязнение заметно на
глаз. Плазма становится мутной, в ней
появляются взвесь, хлопья, белесоватые
пленки на поверхности.

Слой эритроцитов
принимает темно-вишневую окраску. В
некоторых случаях Инфицирование ведет
к раннему гемолизу или превращению
крови в желеобразную массу с неприятным
запахом и выделением пузырьков газа
при проколе пробки.

Таким образом, доброкачественная кровь,
находящаяся в ампуле, в покое делится
на три слоя: на дне – слой эритроцитов;
сразу над ним – очень тонкий слой
лейкоцитов и сверху – слой прозрачной,
слегка желтоватой плазмы.

2. Контрольные исследования при
проведении проб на совместимость перед
гемотрансфузией.
Предупреждение несовместимости перед
переливанием.

Причины несовместимости и меры ее
предупреждения.

Если реципиенту, в крови которого имеются
антитела, перелить кровь донора,
эритроциты которого содержат антигены,
против которых направлены эти антитела,
такая кровь будет разрушаться в организме
реципиента, т.е. она является для него
несовместимой.

Перед переливанием крови врач должен
убедиться в том, что предназначенная,
для переливания кровь не содержит
антигенов, против которых в крови
больного имеются антитела, т.е. совместима
с кровью реципиента.

– правильно выбрать кровь в отношении
групп крови системы АВО;

– правильно выбрать кровь в отношении
резус – принадлежности;

– проверить всю относящуюся к этому
документацию;

– произвести контрольные исследования,
включающие пробы на совместимость.

Врач должен также учесть, что кроме
нормально существующих антител системы
АВО – а и β имеющих большое практическое
значение изоиммунных антител антирезус
– D, у реципиента, хотя и
значительно реже, могут встретиться
антитела к другим антигенам эритроцитов:
C, E, c, e, Cw, K, Fy, Jk, M, N, S,
s и др.

Предупреждение несовместимости по
отношению к этим антигенам, так же как
и в отношении антигена D должно, в первую
очередь, служить тщательное выявление
прививочного, трансфузионного и
акушерско-гинекологического анамнеза.

Выбор крови, совместимой в отношении резус-антигена d.

Кроме групп системы АВО, при переливании
крови должна учитываться резус-принадлежность
донора и реципиента. Переливаемая кровь
должна быть одноименной с кровью
реципиента в отношении резус принадлежности.

Это особенно важно для резус-отрицательных
реципиентов, независимо от наличия или
отсутствия у них резус-антител, в
последнем случае для предупреждения
возможного их образования.

При переливании эритроцитов, освобожденных
от плазмы, резусположительным новорожденным
с гемолитической болезнью, рекомендуется
введение резус-отрицательных эритроцитов.

Проверка документации.

Выбрав кровь для переливания больному,
специалист обязан;

а) сравнить запись определения группы
крови реципиента по системе АВО (в
истории болезни) и донора (на контейнере
с кровью, приготовленной для переливания)
и убедиться, что, согласно этим записям,
кровь донора совместима с кровью
реципиента в отношении групп крови
системы АВО;

б) проверить запись о резус принадлежности
в истории болезни реципиента и на
контейнере с кровью и убедиться, что
кровь донора и реципиента совпадают по
резус принадлежности.

После проверки документации необходимо
сделать контрольные исследования.

Как проводится исследование?

б) определить групповую принадлежность
крови донора, взятой из флакона (из
трубочки контейнера) и сверить результат
с записью на нем;

отбор образца крови

в) произвести пробу на совместимость
по группам крови АВО;

г) произвести пробу на совместимость
по резус-антигену D;

Заключение

Самыми важными показателями, позволяющими
судить о совместимости переливаемой
крови (эритроцитов) являются совместимость
по группе крови системы АВО и совместимость
по резус-антигену D.

Для обеспечения совместимости переливаемой
крови необходимо на основании определения
группы крови реципиента и записи в
истории болезни, а также документации
на контейнере с кровью, правильно выбрать
кровь в отношении групп крови системы
АВО и резус принадлежности.

Непосредственно перед переливанием
крови, независимо от проведенных ранее
исследований и имеющихся записей, врач
обязан снова проверить групповую
принадлежность реципиента и крови
донора, сделать пробу на совместимость
по группам крови АВО и одну из проб на
совместимость по резус-антигену D.

Врач должен предусмотреть возможную
несовместимость по отношению к другим
антигенам и принять меры для ее
предупреждения.

Если кровь (эритроциты) донора оказалась
несовместимой с кровью реципиента в
пробе на совместимость по группам АВО
или в пробе на совместимость по
резус-антигену О, она не должна быть ему
перелита!

Если кровь (эритроциты) донора оказалась
совместимой с кровью реципиента в пробах
на совместимость по группам крови АВО
и резус-антигену D и нет указаний на
несовместимость по отношению к другим
антигенам – кровь (эритроциты) может
быть перелита.

Процедура определения группы крови и резус-фактора

Переливание начинается с биологической
пробы.

Ответственным за выполнение перечисленных
требований и обеспечение совместимости
при переливании крови является врач
специалист, переливающий кровь.

2.Кровезаменители детоксикационного действия.

Лечебный эффект переливания крови
складывается из замещения (субституции),
гемостаза, стимуляции и гемодинамического
воздействия. Эффект перелитой крови
зависит от ее количества, метода и
скорости переливания, характера болезни.

Наиболее значимо замещающее действие
(субституция), особенно в случаях острой
кровопотери, когда только переливание
цельной крови может спасти больного от
неминуемой смерти, Перелитые эритроциты
находятся в крови реципиента 30-120 дней.

Продолжительность циркуляции перелитых
эритроцитов обусловлена качеством
перелитой крови, и зависит от методов
и сроков консервации крови. Кроме того,
заместительный эффект переливания
крови находится в зависимости от
реактивного состояния организма
реципиента: аллергия, лихорадка, болевые
раздражения, иммунологические факторы.

Доказано также длительное пребывание
белков плазмы донора в крови реципиента
– 18-36 дней. Белки донорской плазмы
включаются в азотистый обмен реципиента,
о чем свидетельствуют факты поддержания
азотистого равновесия у реципиентов,
у которых пищевые белки заменяются
внутривенно введенными белками плазмы
крови.

Имеют значение также восполнение объема
циркулирующей крови, увеличение
дыхательной поверхности эритроцитов
и нормализации кислородного обмена.

Гемостатистическое действие перелитой
крови максимально проявляется при
переливании свежей крови или нативной
плазмы. Перелитая кровь ускоряет
свертывание крови и уменьшает проницаемость
кровеносных сосудов.

Однако переливание
массивных доз свежезаготовленной
донорской крови также может способствовать
в отдельных тяжелых случаях нарушению
гемостатического баланса и приводить
к развитию синдрома диссеминированного
внутрисосудистого свертывания крови
(ДВС).

Сохранение крови в жидком состоянии и
ее гемостатическая функция осуществляется
многокомпонентной физиологической
системой регуляции агрегатного состояния
крови (PACK – система), представленной
сложным взаимодействием плазменных
компонентов и факторов, содержащихся
в форменных элементах крови и тканях.

Трансфузии умеренных доз донорской
крови 1-3 дней хранения оказывают
существенное гемостатическое действие
благодаря активации сосудисто-тромбоцитарного,
а в некоторых случаях плазменного
гемостаза. Установлена малая эффективность
переливаний длительно хранившейся
крови.

Гемодинамическое действие. Переливание
крови оказывает всестороннее действие
на сердечно-сосудистую систему: увеличение
ОЦК и его стабилизация на высоком уровне,
увеличение венозного притока к правому
сердцу, усиление работы сердца, повышение
минутного объема крови, усиление
линейного и минутного кровотока.

Оживляется гемодинамика в системе
микроциркуляции: расширяются артериолы
и венулы, раскрывается сеть каппиляров
и ускоряется в них движение крови,
сокращаются артериовеновные шунты.
Повышается потребление кислорода и
нормализуются показатели кислотно-щелочного
состояния. Такие изменения в системе
гемодинамики ярко выражены у людей с
острой кровопотерей.

Стимулирующее действие переливания
крови. У реципиентов наблюдаются
разнообразные изменения обмена веществ:
повышается основной обмен, увеличивается
дыхательный коэффициент, повышается
газообмен, переливание крови повышает
потребление сахара, усиление включения
“меченной” аминокислоты в белки
печени, почек, кишечника, костного мозга,
что является наглядным показателем
ускоренного обновления белковых структур
в организме реципиента.

Переливание
крови оказывает стимулирующее действие
на факторы естественного иммунитета:
повышается фагоцитарная активность
гранулоцитов крови, повышается выработка
антител в ответ на действие тех или иных
антигенов.

С целью дезинтоксикации в хирургии
переливают кровь крайне редко: при
септических состояниях, непроходимости
кишечника, перитонитах и обширных
ожогах.

Запрещено переливание крови с целью
парентерального питания, потому, что
полезные белки плазмы (фракция альбуминов)
ассимилируются в организме только через
2 недели, в то же время наблюдается
выраженная изоиммунизация.

Механизм действия препаратов основан
на способности связывать и выводить
токсины из организма.

Препараты: гемодез, полидез, неогемодез,
перистон, неокомпенсан.

4. Регуляторы водно-солевого обмена и кислотно-щелочного состояния (электролитные растворы).

Кристаллоидные растворы, имеющие низкую
молекулярную массу, легко проникают
через стенки капилляров, заполняя
интерстициальное пространство. Массивные
трансфузии электролитных растворов не
приводят к изменению осмотического
градиента внеклеточного сектора.

Массивная трансфузия солевых растворов
направлена на восстановление объема и
нормализацию исходного давления
интерстициальной жидкости, сдерживающей
внутрикапиллярное давление и выход
внутрисосудистой жидкости из кровяного
русла.

В настоящее время наиболее широкое
применение в лечебной практике имеют
солевой изотонический раствор хлорида
натрия, растворы Рингера-Локка,
кристаллоидные растворы с фармакологическими
добавками: лактатно-солевой раствор
Гартмана, лактосол, дисоль, ацесоль,
квинтасоль и др.

Сюда же относятся и осмодиуретические
вещества, обладающие дегидрационным
действием, а также осуществляющие
коррекцию состава крови, растворы
многоатомных спиртов – маннитола и
сорбитола.

Для нормализации кислотно-щелочного
равновесия используют: 4% раствор
гидрокарбоната натрия, буферные растворы
– трисамин.

Процедура определения группы крови и резус-фактора

Показания: при травматическом, ожоговом
и операционном шоке, обезвоживании,
интоксикации.

Понравилась статья? Поделиться с друзьями:
Beauty-Krasota.ru
Adblock detector